Defect
in Macromolecular Cholesteric Liquid Crystals
Wang linge1 Huang Yong1,2
(1Laboratory of Cellulose and Lignocellulosics Chemistry, Guangzhou
Institute of Chemistry, Chinese Academy of Sciences, Guangzhou 510650, China 2Institute
of Chemistry, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100080, China)
Abstract The structures,
types and generation of defects in macromolecular cholesteric liquid crystals are
reviewed, the relationship between the structure of defects and the textures in
cholesteric liquid crystals, and the self-assembly processes caused by helical lines of
singularity in biological polymers are discussed in geometric aspect.
Key words macromolecular, cholesteric, defect, disclination.
摘要
从几何学方面综述了胆甾型液晶相中缺陷的产生、结构和类型,及大分子胆甾型液晶相中的缺陷结构对织构的影响,以及生物高分子中因缺陷结构而产生的自组装现象。
关键词 大分子 胆甾相 缺陷 向错
大分子胆甾型液晶相中的缺陷结构的周期转动。
| |
 |
|
图1 各种强度轴向向错 |
另外,轴向c向错中把切割面S上的液晶分子都以平行于边界线L的轴旋转a角,那么切割面上的液晶指向矢分布将与把整个切割面移动-Pa/2p距离的情况相同。因此,把切割面S上的液晶分子旋转a
角和把切割面S沿边界线平移-Pa/2p是等价的。这样,由切割面S1、S2相对转动±Np而产生的轴向向错线,也可以由S1、S2相对移动± NP/2的位错线来表示[5]。
1.2.3 l 型、t 型向错
对l型向错可以看作是由螺旋轴的奇异性引起的,因为缺陷的旋转轴W和局域指向矢n的指向相平行。如图2中给出了强度S=-1/2的l
型向错产生过程。
| |
 |
|
图2 产生t-1/2的Volterra过程 |
|
(a) 沿边界线为L的曲面S切开,使S分成上下完全相同两切割面S1、S2
(b) 两切割面S1、S2绕一旋转轴W各自相对旋转p/2
(c) 液晶通过分子间相互的自由张弛达到平衡状态,产生t-1/2向错 |
而t
型向错是螺旋轴W和局域指向矢n共同产生的奇异线。如图3中给出了几种强度S=1/2的l型、t型向错。图中短线表示指向矢的取向与纸面平行;点表示指向矢的取向与纸面垂直;钉子形表示指向矢的取向与纸面斜交,钉子头指向读者。从图3可以看出,l型向错线与t型向错是不同的,l型向错线与局域指向矢n的指向相平行,因此被普遍认为是非奇异性的[6],指向矢在中心是连续的。而t 型向错线与局域指向矢n的指向相垂直,因此具有一个较高能量的奇异核心,因而也较少出现[1,7]。
| |
 |
|
图3 几种强度S=1/2的l型、t型向错 |
|
(a)l-1/2向错 (b)t+1/2向错 (c)l+1/2向错 |
1.2.4 垂向向错
垂向向错的产生是在Volterra过程中旋转轴W平行胆甾型液晶相的螺旋轴,但垂直于切割面S (即垂直于向错线L),所以也称垂向c向错。垂向c向错在向错线L左右两边的指向矢相互垂直,它最简单的例子就是格兰德燃—伽诺劈[8,9](Grandjean—Cano wall)中出现的向错线。格兰德燃—伽诺劈的产生是将胆甾型液晶相放入一个劈形的液晶盒中,液晶盒的玻璃基片做了使液晶分子指向矢作沿基片面平行排列的定向处理。由于基片的锚定作用使基片上的液晶指向矢相互平行,这样两基片间的液晶厚度必然为NP/2(N为正整数,P为螺距)。但由于上、下基片的厚度在逐渐变化,所以螺距也会适当变化以适应边界条件要求,但不会偏离正常螺距P0很大,这样在两个正常半螺距整数值NP0/2之间就会出现一条向错线。通过偏光显微镜可以观察到向错线形成的规则平行条纹。
另外,由于形成c型向错的能量较高,为了降低能量,一般c向错会分裂成具有不同符号的l或t的向错对[1,5],特别是垂向c向错较容易分裂。
1.3 向错对
图4中给出了几种由垂向c向错分裂产生的由具有相反符号的l型和t型向错组成的向错对。它们有一共同的规律就是必须具有相反的符号,而且向错线间距离须为四分之一螺距的整数倍(D= NP/4)。另外,向错对的结构还与位错十分类似,从图4中可看到不同向错对也可被视为液晶相中增加或移去不同厚度的液晶层。如S=1/2的垂向c向错分裂成的t-+ l+向错对,可视为将一个额外的半螺距厚的液晶层插入正常的液晶层中。但这些向错对出现的几率却不一样[7]。Livolant的报道中[2],t -+ l +,l -
+ t +,l - +
l +较常见,t -+
t +等则较少见;而Giraud-Guille M.M.在研究骨胶原的结构的报道中[10]t - + l +,l -+ l +和t -+ t
+却是常见的。
| |
 |
|
图4 几种向错对类型 |
|
(a) c→l
- + t +
(b) c→t -+ l + (c) c→l -+l + (d) c→t -+ t
+ |
2 大分子胆甾型液晶相中的缺陷结构
2.1 大分子胆甾型液晶相缺陷结构与织构的关系
织构(texture)其实是液晶体中缺陷的集合的产物,不同的位错和向错会产生不同的织构。所以,人们早在70年代就通过偏光显微镜[11]和电镜[12]
观察胆甾型液晶相的织构来研究它的缺陷。在许多文献中都提到了胆甾型液晶相的缺陷与织构的关系[2,13],一般认为:平面织构(planar texture )中只有位错;多边形织构(polygonal texture)中有位错和焦锥结构(focal conic);扇形织构(fan texture)中有位错,焦锥结构和向错。但与近晶相的多边形织构和扇形织构相比,胆甾相的织构缺少特征的向错线对(椭圆和双曲线)[6]。此外Saupe还研究了在特殊边界条件下,胆甾相的向错结构和织构[6]。如靠近基片表面的液晶分子垂直排列,而液晶相内部分子平面排列时,为适应这种条件,在基片表面附近将会产生一系列的+1/2 和-1/2相间的向错线[6],并会相应产生一些特殊的织构花纹[14]。
对于大分子胆甾型液晶相的缺陷结构和它所引起的织构也在各种现代分析仪器下得到研究。在大分子胆甾相中,前面提到的向错和向错对等缺陷结构通过偏光显微镜[15],透射电子显微镜TEM[7,16]和扫描电子显微镜SEM[17,18]都观察到过。另外近年来,还通过低压高分辨率扫描电镜LVHRSEM[14],低压扫描电镜LVSEM[19]和原子力显微镜AFM[14,20]对大分子胆甾型液晶相的缺陷结构进行观察和研究。
2.2 生物高分子中的胆甾相缺陷结构
现在,缺陷已不再被认为是物质中的缺点,相反作为物质结构中的一种普遍现象而被大家所接收。缺陷对物质的结构有很大的影响,在同为凝聚态的固体中,某些情况下缺陷是晶体生长的控制因素。在对生物高分子的研究中,人们在很早的时候就观察到不少生物高分子呈胆甾相,如Robinson等人就首先观察到DNA、RNA能在溶剂中形成胆甾型液晶相[21],研究发现它们形成的双螺旋结构[22]也是一种缺陷结构,而且发现这种双螺旋结构有自组装的能力。以腰鞭毛虫的染色体[23,24]为例,它并不是理想的胆甾型液晶相的堆砌,它的分子形成的最初胆甾相结构可看作是含有两条螺旋形的向错线使分子形成胆甾相结构的初始链层s 0,然后其它类似s 0层的链层s I以s 0为螺旋轴继续螺旋形的等距缠绕。并且这些螺旋链层将形成呈六角形堆砌(hexagonal order)的一束。但实际上随着距链层s 0越远,链层s I的扭曲越大,这样在垂直于链层s 0的方向上,也出现一条螺旋轴,分子的排列也随螺旋轴转动,即形成双螺旋轴结构[24]。而在更大的区域中,几条束与束之间又会螺旋形缠绕,然后形成更大的六角形堆砌。如图5所示:
| |
 |
|
图5 腰鞭毛虫染色体的双螺旋轴结构 |
|
(a) 中心螺旋链层s0,向错线H1,
H2
(b) 分子指向矢图,黑点和空心点分别代表一条向错线轨迹
(c) 为几条辊放心链层形成的六角形堆砌 |
如此这样规律的自组装下去,直至肉眼可见的结构和组织。其它的纤维状或球状蛋白质也有类似几何结构和形成过程,在对骨胶原纤维(collagen)[10,25]的研究中发现,骨胶原纤维结构的形成与腰鞭毛虫的染色体很相似,只不过它的分子最初形成三螺旋多肽链结构[26]。可以说正是由于生物高分子最低级结构中的缺陷结构引起了生物体的自组装过程和胆甾相螺旋结构。因此,对生物高分子中胆甾相缺陷结构的研究必将为人类进一步探索生命过程提供新的方法和线索。
3 参考文献
[1] Friedel J, and Kleman M.
Fundamental Aspects of Dislocation Theory, Washington D. C.: NBS Special publication,
1970: 607.
[2] Livotant F. Cholesteric liquid crystalline phase given by three helical biological
polymer: DNA, PBLG, and xanthan: A comparative analysis of their texture. J. Phys., 1986,
47:1605.
[3] 谢毓章.液晶物理学.北京: 科学出版社,1988:116.
[4] De gennes P G. The Physics of Liquid Crystals. Oxford: Clarendon Press, 1974:245
[5] Bouligand Y, and Kleman M. Helical disinclination pairs in cholesterics. J. Phys.,
1970, 31:1041.
[6] Saupe A. Disclinations and Properties of the Directorfield in Nematic and Cholesteric
Liquid Crystals. Mol. Cryst. Liq. Cryst., 1973, 21: 211.
[7] Hara H, Satoh T, Toya T et al.. Cholesteric Liquid Crystalline Polyesters. 1.
Cholesteric Liquid Crystalline Copolyesters Based on Poly(chloro-1,4-phenylene
trans-1,4-cyclohexanedicarboxylate). Macromolecules, 1988, 21:14.
[8] Grandjean F. The existence of equidistant layers normal to the opic axis in
anisotropic liquids. Compt. Rend. Acad. Sci., 1921, 172:71.
[9] Cano R. An explanation of Grandjean discontinuities. Bull. Soc. Franc. Miner. Crist.,
1968, 91:20.
[10] Giraud-Guille M M. Liquid Crystallinity in condensed TypeΙCollagen Solutions A Clue
to Packing of Collagen in Extracellular Matrices. J. M. Biol., 1992, 224:861.
[11] Cladis P E, and Kleman M. The cholesteric Domain Texture. Mol. Cryst. Liq. Cryst.,
1972, 16:1.
[12] Voss J, and Voss B Z. SEM studies of cholesteric liquid crystals. Naturforsch A,
1976, 31A:1661.
[13] Bouligand Y. Mesomorphic textures. 2. Polygonal fields in cholesterics. J. Phys.,
1972, 33:715.
[14] Bunning T J, Vezie D L, Lloyd P F et al.. Cholesteric liquid crystals: image contrast
in the TEM. Liq. Crys., 1994, 16(5):769.
[15] Huang Y, and Shen J R. Textures and Defects in Lyotropic Liquid Crystals of
Ethyl-Cyanoethyl Cellulose. Liq. Crys., 1995, 19(3):313.
[16] Huang Y, and Jiang S H. TEM observation of (E-CE)C/PAA composite polymerized by
ultraviolet initiation. Polym. Bull., 1992, 27:535.
[17] Bunning T J, Klei H E, Samulski E T et al.. Bilayer structures in cholesteric,
cyclic-siloxane liquid crystals. Liq. Crys., 1991, 10:445.
[18] Costello M J, Meiboom S, and Sammon M. Electron microscopy of a cholesteric liquid
crystal and its blue phase. Phys. Rev. A., 1984, 29:2957.
[19] Huang Y, Loos J, Yang Y Q et al.. Macromolecular Cholesteric Order Observed by
Electron Microscopy. J. Polym. Sci. B: Polym. Phys. Ed., 1998, 36: 439.
[20] Huang Y, Yang Y Q, Petetmann J. Atomic force microscopy on ethyl-cyanoethyl
cellulose/polyacrylic acid composites with cholesteric order. Polymer, 1998, 39(22): 5301.
[21] Robinson C, Ward J C, Beevers R B. Liquid crystalline structure in polypeptide
solutions. Discu. Faraday Soc., 1958, 25:29.
[22] Etkin W. Representation of the structure of DNA. Bioscience, 1973, 23:652.
[23] Kleman M. Proceed of the 2nd Asia Pacific Physics Conference,
Bangalore:1986:157
[24] Kleman M. Liquid Crystal Polymer: Fundam. Prop., 1991:365.
[25] Giraud-Guille M M. Cholesteric twist of coolagen in vivo and in vitro. Mol. Cryst.
Liq. Cryst., 1987, 153:15.
[26] Woodhead-Galloway J. Collagen in Health and Disease. Longman Group Limited, 1982:28.